实时荧光定量PCR检测原发性肝癌中PRL-2基因的表达
作者:程超, 郭爱林, 巫国勇, 谢春玲, 吴伟康
【摘要】 【目的】 建立TaqMan实时荧光定量逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)法检测肝细胞再生磷酸酯酶2(PRL-2) mRNA表达水平,并应用该法检测原发性肝细胞癌中PRL-2基因的表达。【方法】 构建含PRL-2基因开放阅读框架的T载体,制作标准曲线。提取手术切除12例人肝癌、门静脉癌栓(PVTT)和癌旁组织总RNA 并逆转录为cDNA。应用实时荧光定量PCR法观察人肝细胞癌组织和门静脉癌栓及癌旁组织中PRL-2 的表达水平。【结果】 线性检测范围达5个数量级,最低检测下限为1×102 拷贝,最高检测上限为1×106 拷贝。PRL-2在所有的门脉癌栓及10例肝癌组织表达,仅在4例癌旁组织中表达。门脉癌栓PRL-2 mRNA表达水平显著高于肝癌及癌旁组织(P< 0.01),肝癌组织表达显著高于癌旁组织(P< 0.01)。【结论】 实时荧光定量PCR可以准确定量测定PRL-2基因的表达;PRL-2基因在门脉癌栓的更高表达提示其在肝细胞癌的发生、转移中可能起重要作用。
【关键词】 肝细胞癌; 聚合酶链反应; 基因表达; PRL-2基因
Abstract:【Objective】 To quantitatively detect the mRNA expression level of PRL-2 in primary hepatocellular carcinoma with RT-PCR method. 【Methods】 T vector including open reading frame of PRL-2 gene was constructed to make standard curve. The total RNA isolated from human HCC, portal vein tumor thrombosis (PVTT) and adjacent liver tissue was reversely transcribed into cDNA. The RT-PCR method was used to analyze the expression level of PRL-2 gene. 【Results】 The RT-PCR method was performed successfully to precisely detect RNA level ranging from 1×102 copies to 1×106 copies. PRL-2 was expressed by all the portal vein tumor thrombosis (PVTT) and 10 cases HCC, but only by 4 cases paratumor tissue. The expression level of PRL- 2 gene was higher in PVTT than that in paratumor liver tissues and in HCC (P< 0.01), and it was higher in HCC than that in paratumor liver tissues. 【Conclusion】 The RT-PCR is the precise method to quantitatively detect PRL- 2 gene RNA level. The higher expression of PRL- 2 gene in PVTT suggesting that it may play an important role in the development and metastasis of the HCC.
Key words: hepatocellular carcinoma; polymerase chain reaction; gene expression; PRL-2 Gene
[J SUN Yat-sen Univ(Med Sci), 2007, 28(6):702-705]
肝细胞再生磷酸酯酶 (phosphatase of regenerating liver, PRL)是一类新发现的小分子酪氨酸蛋白磷酸酯酶,由PRL-1、PRL-2和PRL-3三个成员组成[1]。它们具有酪氨酸蛋白磷酸酯酶共同活化序列HCXXGXXR,分子量约为20 ku,氨基酸同源性超过76%[2,3]。最近的研究表明,PRL-1、PRL-3与肿瘤的转移密切相关,特别是PRL-3与结肠癌、胃癌和黑色素瘤的远处转移存在密切相关性[4-8]。而PRL-2与肿瘤发生和转移的关系尚少见文献报道,为此我们建立了实时荧光定量PCR(real-time quantitative PCR,QT-PCR)检测PRL-2基因的方法,并对PRL-2 mRNA在肝癌中的表达进行了研究。
1 材料与方法
1.1 肝癌组织
12例新鲜肝癌、门静脉癌栓和癌旁肝脏组织来自2001年-2003年中山大学附属第一医院手术标本,手术切除组织立即液氮冻存。肿瘤组织均经病理检查证实,为肝细胞癌,根据TNM分期[9]均为Ⅳa期。
1.2 试 剂
Trizol Reagent、SuperScript Ⅱ逆转录试剂盒、DNaseⅠ购自美国Invitrogen 公司,PCR 试剂购自上海申能博彩生物公司,引物及荧光探针由上海博亚公司合成。ABI7000 荧光定量PCR仪为美国ABI公司产品。
1.3 总RNA抽提及反转录
取冻存组织100 mg ,加入Trizol Reagent 1 mL,匀浆后加入0.2 mL 氯仿,离心后吸取上清,加入0.5 mL异丙醇,离心沉淀后弃上清,70%乙醇洗沉淀,DNase I酶解可能残余的基因组DNA,RNA 溶于DEPC 水,甲醛变性凝胶电泳和以260 nm 及280 nm 吸光度值计算所获RNA 含量及纯度,分装后-80 ℃保存待用。反转录操作按Superscript Ⅱ(Invitrogen公司) 提供操作说明书进行,所得cDNA -20 ℃保存。
1.4 PRL-2 T 载体的构建及标准品的制备
PRL-2 引物设计: 5′端引物:ggatccact ATGGACCGTCCAGCCC,3′端引物:ctcgagCTACT GAACACAGCAATGCC,由上海生工公司合成引物。收集对数生长期的HepG2细胞,约 1×107,按照Trizol的说明提取RNA ,经紫外分光光度仪测定A260 nm定量,取1 ?滋g RNA为模板,采用one-step RT-PCR扩增特异性PRL-2片段(504 bp)。扩增产物用 10 g/L琼脂糖凝胶进行电泳。鉴定条带的位置正确后, 切下目的条带, 参照柱式小量胶回收试剂盒中的操作说明, 回收、纯化,装入pMEM T easy 载体, 并经测序证明确实含有PRL-2 504 bp 片段。重组T 载体经碱裂解法抽提及PEG纯化后,以260 nm 吸光度测定含量,根据载体分子量计算其拷贝数, 以10 倍进行连续稀释, 得到拷贝数分别为1×106、1×105、1×104、1×103、1×102和1×101/?滋L的样品, 即可作为制备Q-PCR 标准曲线的标准品。
1.5 引物与TaqMan探针
引物和探针序列均由ABI Primer Express 2.0软件辅助设计。PRL-2引物 :上游5′-ACCAATGCTACTCTCAACAAGTTCA-3′;下游 5′-TGGCCAATCTAGAACGTGGATT-3′(131 bp);探针序列: 5′FAM-TAAGAAGTATGGAGTGACGACT-TAMRA 3′由上海基康公司合成。
1.6 TaqMan Q-PCR
PCR 体系总量25 μL∶ cDNA 2 μL, 10 ×Buffer 2.5 μL, 25 mmol/L MgCl2 1.5 μL, 10 mmol/L dNTP 0.5 μL, Taq 酶2.5 U , 100 mmol/L 引物及探针各0.1 μL,加双蒸水至25 μL。 PCR 条件为:94 ℃ 5 min 后,以92 ℃ 30 s, 60 ℃ 30 s 循环40 次。设定在每个循环的变性期结束后, 程序自动记录上一循环最后10% 时间的平均荧光值, 以表示在该循环结束时的PCR 产物的量。荧光种类选择FAM-490, 程序将按照设定的激发和发射光谱选择滤镜组, 分别为490 nm 和530 nm。反应完成后, 得到含所有标本的记录点曲线,选择PCR baseline subtracted (PCR 基线扣除) 模式进行数据分析和修正。在调整Baseline cycles ( 基线循环) 和计算Threshold value (域值) 后, 计算出Threshold cycle(Ct值)。Ct值和起始拷贝数有着对应关系, 可通过外标准曲线精确计算样品的起始拷贝数。
1.7 数据处理
ABI7000荧光定量PCR仪检测结果由ABI7000 Prism Software1.1系统进行分析,标本重复性及组间差异比较采用SPSS 10.0 进行统计。
2 结 果
2.1 标准曲线的建立及线性检测范围
成功地建立了人PRL-2 cDNA 标准曲线(图略),其线性范围可达5个数量级,最高检测上限为1×106 拷贝,最低检测下限为1×102 拷贝。标准曲线的直线回归相关系数r =-0.998 ,斜率为-3.52。